Avaliação in-vivo do fermentado botânico de Ilex paraguariensis frente ao fungo Sclerotinia sclerotiorum no cultivo de alface crespa
Palavras-chave:
Controle alternativo, Sustentabilidade, Antifúngico.Resumo
Sclerotinia sclerotiorum é considerado um dos patógenos mais importantes do mundo, pois afeta um vasto número de hospedeiros. O controle deste patógeno nas diversas culturas é limitado em função de sua capacidade de formar estruturas de resistência (escleródios) que garantem sua sobrevivência no solo mesmo em condições desfavoráveis. Assim, o objetivo deste trabalho, foi determinar in-vivo o efeito do fermentado botânico de Ilex paraguariensis sobre Sclerotinia sclerotiorum, frente a mortandade de plântulas de alface cultivadas em vaso. O fermentado botânico foi produzido com 1,5 L de água não tratada e 500 g da planta triturada, a fermentação ocorreu de maneira espontânea, mantendo-se a mistura em ambiente escuro até cessar a fermentação. Após, a calda foi filtrada e misturada com água destilada nas concentrações de 20% e 40%. Os tratamentos utilizados foram T1: somente patógeno; T2: preventivo (5 h antes da inoculação do fungo e somente 1 aplicação); T3: curativo (5h após a inoculação do fungo, aplicação semanal, no período de 3 semanas); T4: somente água. Foram utilizadas 30 plantas para cada tratamento. Depois de 50 dias de experimento, 70% das plantas do T1, morreram. E todas as alfaces (tratadas com 40% do fermentado) tanto do T2, quanto do T3 e T4 se mostraram sadias. Foi realizada a pesagem da planta e medido o crescimento radicular das sobreviventes. As alfaces do T2 apresentaram 68 g e 30 cm. No T3, o peso da planta foi de 57 g para concentração 20% e 70 g em 40%. Estes resultados sugerem que o fermentado de I. paraguariensis poderão ser utilizados no controle do fitopatógeno S. sclerotiorum da alface e ainda agir como um indutor de crescimento da referida hortaliça.
Referências
AMORIN, L. Sobrevivência do inóculo. In: BERGAMIN FILHO, A.; KIMATI, H.; AMORIN, L. Manual de Fitopatologia: princípios e conceitos. São Paulo: Ed Agronômica Ceres, 2005. v.1, cap.13, 246-267 p.
BIEZA, K.; LOIS, R. An Arabidopsis Mutant Tolerant to Lethal Ultraviolet-B Levels Shows Constitutively Elevated Accumulation of Flavonoids and Other Phenolics. Plant Physiology, v. 126, p. 1105-1115, 2001.
BOWERS, M. D.; STAMP, N. E. Effects of plant age, genotype, and herbivory on Plantago performance and chemistry. Ecology, v. 74, p. 1778-1791, 2003.
BUBOLS, G. B. et al. The antioxidant activity of coumarins and flavonoids. Mini-Reviews in Medicinal Chemistry, v.13, n.3, p. 318-334, 2013.
CARVALHO, D. D. C. et al. Biological control of white mold by Trichoderma harzianum in common bean under field conditions. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, DF, v. 50, n. 12, p. 1220-1224, 2015.
CEASA-PARANÁ. Disponível em: < www.ceasa.paraná > Acesso em: 30/04/2015.
COLEY-SMITH, J. R. & R. C. COOKE. Survival and germination of fungal sclerotia. Annual Review of Phytopatlology, Palo Alto. California. v. 9, p. 65-92, 1971.
DE SOUZA L. M. et al. Comprehensive analysis of maté (Ilex paraguariensis) compounds: Development of chemical strategies for matesaponin analysis by mass spectrometry. Journal of Chromatography A, v. 1218, p. 7307– 7315, 2011.
DUTRA, F. L. G.; RIBANI, R. H. Determinação de compostos fenólicos por cromatografia líquida de alta eficiência isocrática durante estacionamento da erva-mate. Química Nova, 2010, v. 33, n.1, p.119-123.
FILIP, R.. et al. Phenolic compounds in seven South American Ilex species. Fitoterapia, v. 72 (7), p. 774-778, 2001.
GERALDINE, A. M. et al. Cell wall-degrading enzymes and parasitism of sclerotia are key factors on field biocontrol of white mold by Trichoderma spp. Biological Control, San Diego, v. 67, n. 3, p. 308-316, 2013.
GIL, R; SMITH, A.; CHAVES, B.; WYCKHUYS, K.; FORERO, C. AND JIMÉNEZ, J. Combined efficacy assessment of soil solarization and bio-fungicides for management of Sclerotinia spp. in lettuce (Lactuca sativa L.). Agronomía Colombiana, v. 27, n. 2), p. 193-201, 2009.
GLIESSMAN, STEPHEN R. Perturbação, sucessão e manejo do agroecossistema. Agroecologia: processos ecológicos em agricultura sustentável. Tradução: Maria José Guazzelli. Porto Alegre: Ed. Universidade/UFRGS, 2000, 40-54 p.
GNOATTO, S. C. B.; BASSANI, V. L.; COELHO, G. C.; SCHENKEL, E. P. Influência do método de extração nos teores de metilxantinas em erva-mate (Ilex paraguariensis A. St.Hil., Aquifoliaceae). Química Nova, v. 30, p. 304–307, 2007.
GONÇALVES, A.L.; A. ALVES FILHO, H. MENEZES. Estudo comparativo da atividade antimicrobiana de extratos de algumas árvores nativas. Arq. Inst. Biol., São Paulo, v.72, n.3, p.353-358, jul./set., 2005.
HARTMANN, H. T.; KESTER, D. E.; JUNIOR DAVIES, F. T.; GENEVE, R. L. Plant propagation: principles and practices. 8th. ed. New Jersey: Englewood, 2011, 900 p.
HORBACH, M. A.; BISOGNIN, D. A.; KIELSE, P.; QUADROS, K. M.; FICK, T. A. Micropropagação de plântulas de ervamate obtidas de embriões zigóticos. Ciência Rural, Santa Maria, v. 41, n.1, p. 113-119, jan. 2011.
HUINTER, J.E.; G.S. ABAWI & D.C. CROISER. Effects of timing, coverage, and spray oil control of white mold of snap bean with benomyl. Plant Disease Report, v. 62, n. 7, p. 633-637. 1978.
INSTITUTO BIOLÓGICO. Disponível em http://www.biologico.sp.gov.br/ Acessado em 11 de julho de 2015.
ISOLABELLA, S. et al. Study of the bioactive compounds variation during yerba mate (Ilex paraguariensis) processing. Food Chemistry, v. 122, n. 3, p. 695-999, 2010.
TRONCO, K. M. Q.; BISOGNIN, D. A.; FLEIG, F. D.; HORBACH, M. A. Enraizamento in vitro e aclimatização de microestacas de Ilex paraguariensis A. St Hil. Cerne, v. 21, n. 3, p. 371-378, 2015.
KUBO, I. et al. Antibacterial activity against Streptococcus mutans of mate tea flavor components. Journal Agricultural Food Chemicals, v.41, n.1, p.107-11, 1993.
LEITE, R. M. V. B. C. Ocorrência de doenças causadas por Sclerotinia sclerotiorum em girassol e soja. Londrina: Embrapa Soja, 2005. 3 p. (Comunicado Técnico 76).
LIMA NETO, G.A.1; KAFFASHI, S.1; LUIZ, W.T.1; FERREIRA, W.R.1; DIAS DA SILVA, Y.S.A.1; PAZIN, G.V.1; VIOLANTE, I.M.P.1. Quantificação de metabólitos secundários e avaliação da atividade antimicrobiana e antioxidante de algumas plantas selecionadas do Cerrado de Mato Grosso. Rev. Bras. Pl. Med., Campinas, v.17, n.4, supl. III, p.1069-1077, 2015.
LOUZADA, G. A. S. et al. Potencial antagônico de Trichoderma spp. originários de diferentes agroecossistemas contra Sclerotinia sclerotiorum e Fusarium solani. Biota Neotropica, São Paulo, v. 9, n. 3, p. 145-149, 2009.
MILAN, M.D.; BARROSO, F.M; MELLO, S.C.M; ARAÚJO, M.S.; CARVALHO, D.D.C. Regimes de luz na produção de conídios de Trichoderma harzianum para controle do mofo branco em feijoeiro. Pesq. Agropec. Trop., Goiânia, v. 45, n. 4, p. 434-439, out./dez. 2015.
PAVAN, M.A.; KUROZAWA, C. Doenças da alface (Lactuca sativa). In: KIMATI, H.; AMORIN, L.; BERGAMIN FILHO, A.; CAMARGO, L.E.A.; REZENDE, J.A.M. Manual de fitopatologia: doenças das plantas cultivadas. São Paulo: Ed Agronômica Ceres, 1997. v.2, cap. 4, p.18-25.
RACHWAL, M. F. G. et al. Influência da luminosidade sobre os teores de macronutrientes e tanino em folhas de Erva-mate (Ilex paraguariensis St. Hil.) In: II CONGRESSO SUL-AMERICANO DA ERVA MATE E III REUNIÃO TÉCNICA DO CONE SUL SOBRE A CULTURA DA ERVA-MATE. Anais Porto Alegre: UFRGS/FEPAGRO/ACI Encantado/ Prefeitura de Encantado-RS, 2000.
RODRIGUES, R.; SCHWAN-ESTRADA, K.R.F.; FIORI-TUTIDA, A.C.G.; STANGARLIN, J.R.; CRUZ, M.E.S. Fungitoxicidade, atividade elicitora de fitoalexinas e proteção de alface em sistema de cultivo orgânico contra Sclerotinia sclerotiorum pelo extrato de gengibre. Summa Phytopathol., Botucatu, v. 33, n. 2, p. 124-128, 2007.
SANTOS, R.I. Metabolismo básico e origem dos metabólicos secundários. In: SIMÕES, C.M.O.; SCHENKEL, E.P.; GOSMANN, G.; MELLO, J.C.P.; MENTZ, L.A.; PETROVICK, P.R. Farmacognosia da planta ao medicamento. 2º ed. Editora Universidade/UFRGS/Editora da UFSC, Porto Alegre/Florianópolis, 2004. p. 403- 434.
SCHWAN-ESTRADA, K.R.F.; STANGARLIN, J.R.; CRUZ, M.E.S. Uso de plantas medicinais no controle de doenças de plantas. Fitopatologia Brasileira, Brasília, v.28, p.554-556, 2003.
STANGARLIN, J.R.; SCHWAN-ESTRADA, K.R.F.; CRUZ,M.E.S.; NOZAKI, M.H. Plantas medicinais e o controle alternativo de doenças de plantas. Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento, Brasília, v.11, p.16-21, 1999.
TATTINI, M. et al. Differential accumulation of flavonoids and hydroxycinnamates in leaves of Ligustrum vulgare under excess light and drought stress. New Phytologist, v.163, n.3, p. 547-561, 2004.
VALDUGA, A. T.; GONÇALVES, I.L.; DARTORA, N.; MIELNICZKI-PEREIRA, A.A.; SOUZA, L.M. Phytochemical profile of morphologically selected yerba-mate progenies Perfil fitoquímico de progenies de erva-mate morfologicamente selecionadas. Ciência e Agrotecnologia. v. 40, n.1, p.114-120, 2016.
Downloads
Publicado
Edição
Seção
Licença
Autores que publicam nesta revista concordam com os seguintes termos:- A veracidade das informações e a autoria de todo o conteúdo apresentado nos artigos é de responsabilidade do(s) autor(es). Autores mantém os direitos autorais e concedem à revista o direito de primeira publicação, com o trabalho simultaneamente licenciado sob a Creative Commons Attribution License que permitindo o compartilhamento do trabalho com reconhecimento da autoria do trabalho e publicação inicial nesta revista.
- Autores têm autorização para assumir contratos adicionais separadamente, para distribuição não-exclusiva da versão do trabalho publicada nesta revista (ex.: publicar em repositório institucional ou como capítulo de livro), com reconhecimento de autoria e publicação inicial nesta revista.
- Autores têm permissão e são estimulados a publicar e distribuir seu trabalho online (ex.: em repositórios institucionais ou na sua página pessoal) a qualquer ponto antes ou durante o processo editorial, já que isso pode gerar alterações produtivas, bem como aumentar o impacto e a citação do trabalho publicado (Veja O Efeito do Acesso Livre).
